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如何確認RNA的質(zhì)量?

更新時間:2023-10-10點擊次數(shù):1071

樣本種類繁多且復雜,有些樣本,要想提取到質(zhì)量良好的RNA是非常困難的,那么該如何確認RNA的質(zhì)量呢?讓我們一起來看看吧!

確認RNA的質(zhì)量有以下兩種常見方法

1)檢測RNA溶液的吸光度

280、320、230、260nm下的吸光度分別代表了核酸、背景(溶液渾濁度)、鹽濃度和蛋白等有機物的值。一般的,我們只看OD260/OD280Ratio,R)。

1.82.0時,我們認為RNA中蛋白或者時其他有機物的污染是可以容忍的,不過要注意,當你用Tris作為緩沖液檢測吸光度時,R值可能會大于2(一般應該是<2.2的)。當R<1.8時,溶液中蛋白或者時其他有機物的污染比較明顯,你可以根據(jù)自己的需要決定這份RNA的命運。當R>2.2時,說明RNA已經(jīng)水解成單核酸了。

2RNA的電泳圖譜

一般來說,RNA的電泳都是用變性膠進行的,但是根據(jù)經(jīng)驗,如果你僅僅是為了檢測RNA的質(zhì)量是沒有必要進行如此麻煩的實驗的,用普通的瓊脂糖膠就可以了。

電泳的目的是在于檢測28S18S條帶的完整性和他們的比值,或者是mRNA smear的完整性。一般來說,如果28S18S條帶明亮、清晰、條帶銳利(指條帶的邊緣清晰),并且28S的亮度在18S條帶的兩倍以上,我們認為RNA的質(zhì)量是好的。

以上是我們常用的兩種方法,但是這兩種方法都無法明確的告訴我們RNA溶液中有沒有殘留的RNA酶。如果溶液中有非常微量的RNA酶,用以上方法我們很難察覺,但是大部分后續(xù)的酶學反應都是在37度以上并且是長時間進行的。這樣,如果RNA溶液中有非常微量的RNA酶,那么在后續(xù)的實驗中就會受到殘留的RNA酶的干擾,從而導致實驗失敗

下面,我們介紹一個可以確認RNA溶液中有沒有殘留的RNA酶的方法。

3)保溫試驗

按照樣品濃度,從RNA溶液中吸取兩份1000 ngRNA加入至0.5 ml的離心管中,并且用pH7.0Tris緩沖液補充到10 ul的總體積,然后密閉管蓋。把其中一份放入70℃的恒溫水浴中,保溫1 h。另一份放置在-20℃冰箱中保存1 h。

1h后取出兩份樣本進行電泳。電泳完成后,比較兩者的電泳條帶。如果兩者的條帶一致或者無明顯差別(當然,它們的條帶也要符合方法2中的條件),則說明RNA溶液中沒有殘留的RNA酶污染,RNA的質(zhì)量很好。相反,如果70℃保溫的樣本有明顯的降解,則說明RNA溶液中有RNA酶污染。

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